Immunhämatologische Daratumumab-Interferenz im Verlauf einer Myelomtherapie

Anti-CD38-Antikörper werden vermehrt in der Klinik zur Behandlung von multiplen Myelomen und weiteren Indikationen eingesetzt. CD38 ist ein Oberflächenmolekül, das auf einer Reihe von Zellen und Geweben exprimiert wird, auch auf Erythrozyten. Nach Verabreichung von Anti-CD38-Antikörpern wie Daratumumab kommt es regelmäßig zur Interferenz im indirekten Antihumanglobulintest (IAT), was die Bestimmung irregulärer Antikörper behindert sowie auch die Zuverlässigkeit von Serumverträglichkeitsproben stark einschränkt. Mehrere Verfahren zum Umgang dieser Interferenz werden derzeit von der Deutschen Gesellschaft für Transfusionsmedizin und Immunhämatologie (DGTI) empfohlen. Wir stellen hier einen Vergleich zwischen der DTT-Methode und der Maskierung von CD38 durch ein neues Reagens an einem Patienten mit asekretorischem multiplen Myelom vor.

DaraEx verhindert Daratumumab-Interferenz im indirekten Antihumanglobulintest

Daratumumab ist ein humaner, monoklonaler Anti-CD38-Antikörper, der zur Therapie des multiplen Myeloms eingesetzt wird. CD38 ist ein Oberflächenmolekül, das auf einer Reihe von Zellen und Geweben exprimiert wird, auch auf Erythrozyten. Nach Verabreichung von Daratumumab kommt es regelmäßig zur Interferenz im indirekten Antihumanglobulintest (IAT). In der Folge werden alle auf dem IAT basierenden immunhämatologischen Testverfahren (serologische Verträglichkeitsproben, Antikörpersuchtests, Antikörperdifferenzierungen) unspezifisch positiv. Die Daratumumab-Interferenz kann bis zu 6 Monate nach Ende der Behandlung auftreten. Das aktuelle Standardverfahren mit Dithiothreitol (DTT) zur Behebung der Interferenz ist mit Nachteilen verbunden (unter anderem hoher Zeitbedarf, Beeinträchtigung der Erythrozytenmembran mit Zerstörung bestimmter Blutgruppen und Hämolyse). Wir stellen hier einen neuen, einfachen und zeitsparenden Ansatz zur Vermeidung der Daratumumab-Interferenz vor, der auch den mit DTT verbundenen Erythrozytenschaden vermeidet.

Prokaryotic versus eukaryotic recombinant Lutheran blood group protein for antibody identification

BACKGROUND

At present, identification of antibodies against high-frequency antigens is limited to reference laboratories having panels of rare red blood cell (RBC) specimens in stock. Antibodies against Lu(b) are among the most frequent clinically relevant antibody specificities directed against high-frequency antigens.

STUDY DESIGN AND METHODS

Soluble recombinant Lu(b) fusion proteins consisting of the first three N-terminal immunoglobulin superfamily domains and a V5-His tag were generated. Eukaryotic recombinant Lu(b) proteins were isolated from cell culture supernatant of stably transfected HEK293 cells with anti-V5 Sepharose. Prokaryotic Lu(b) fusion proteins were expressed in Escherichia coli, purified by Ni-NTA, and refolded by chromatographic procedures. Ten anti-Lu(b) serum samples, 6 anti-Lu(a) serum samples, 30 serum samples directed against other blood group antigens, 10 serum samples from patients with RBC autoantibodies, and 100 serum samples from randomly selected donors were used for antibody screening.

RESULTS

Eukaryotic and prokaryotic recombinant Lu(b) proteins proved to be equally suited for identification of anti-Lu(b). Recombinant Lu(b) protein-based enzyme-linked immunosorbent assay correctly identified samples containing anti-Lu(b) sera, and the titers were at least two times higher than those measured by the gel agglutination-based indirect antiglobulin test. In hemagglutination inhibition assays, recombinant Lu(b) protein neutralized all anti-Lu(b), but none of the other alloantibodies decreased in reactivity.

CONCLUSION

Antibody detection systems based on soluble eukaryotic or prokaryotic recombinant blood group proteins have the potential to replace current systems with rare RBCs for identification of alloantibodies against high- or low-frequency antigens. This innovation could bring routine laboratories one step closer to specialized antibody diagnostics.

Weak blood group B phenotypes may be caused by variations in the CCAAT-binding factor/NF-Y enhancer region of the ABO gene

BACKGROUND

Binding of CCAAT-binding factor NF-Y (CBF/NF-Y) to a 43-bp repeat unit in the minisatellite region in the 5' region of the ABO gene (CBF/NF-Y enhancer region) plays an important role in regulating the transcription of ABO genes. The common ABO alleles were found to have CBF/NF-Y enhancer regions with specific numbers of 43-bp minisatellite repeats.

MATERIAL AND METHODS

Blood samples from four healthy blood donors with weak B phenotypes were subjected to extensive ABO genotyping, including nucleotide sequencing of the 5' regulatory region containing the CBF/NF-Y enhancer.

RESULTS

The coding region of the ABO genes exhibited common ABO*B101-heterozygous genotypes in all samples, but unexpected variations were observed in the CBF/NF-Y enhancer region. In two cases, the CBF/NF-Y enhancer motifs did not exhibit the expected ABO allele dependency. One, an AB(weak) sample was heterozygous for ABO*A101 and ABO*B101 but homozygous for the ABO*B101-specific CBF/NF-Y motif. The second had a common ABO*B101/ABO*O01 genotype but was heterozygous for ABO*A101- and ABO*O01-specific enhancer motifs. In the other two samples, novel CBF/NF-Y motifs were found. One contained a shortened version of an otherwise ABO*B101-specific CBF/NF-Y motif, and the other had a single-base substitution located 12 bp upstream from the beginning of the first 43-bp repeat of an ABO*B101-specific CBF/NF-Y enhancer sequence.

CONCLUSION

The frequency of variations in the CBF/NF-Y region of the ABO gene in these samples with presumably common ABO*B101 alleles suggests that weak blood group B phenotypes may be caused by sequence variations in the CBF/NF-Y regulatory region.