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Lopes-Torres EJ, da Silva Pinheiro RH, Rodrigues RAR, Francez LDC, Gonçalves EC, Giese EG. Additional characterization of the adult worm Mammomonogamus laryngeus (Railliet, 1899) and the tissue lesions caused by the infection in buffaloes. Vet Parasitol 2020; 283:109164. [PMID: 32544763 DOI: 10.1016/j.vetpar.2020.109164] [Citation(s) in RCA: 2] [Impact Index Per Article: 0.5] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [MESH Headings] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 01/16/2020] [Revised: 06/04/2020] [Accepted: 06/05/2020] [Indexed: 11/18/2022]
Abstract
Mammomonogamus spp. are parasites with curious characteristics, such as the "Y" shape that results from male and female maintaining the permanent copulation position and the controversial presence or absence of spicules. These nematodes are hematophagous and cause damage to the upper respiratory tracts of cattle, sheep, goats, deer, wild yaks, and orangutans. Human infection is rare and most cases until now have been in the Caribbean Islands or in Brazil, and mainly in farmworkers but recently there have been reports affecting tourists. In the present work, the parasites were recovered from the laryngopharynx and larynx region of Bubalus bubalis on the island of Marajó, Pará, Brazil. Different microscopy methodologies were applied (bright field, fluorescence, and scanning electron microscopy) to explore the ultrastructural details of the anterior end, genital structures and the host tissue damage caused by the nematodes. The well-developed mouth is an important structure in the identification of these nematodes and used by the parasite to adhere to the host's tissue. Different methodologies in microscopy and molecular biology contributed to a detailed morphological description and showed the phenotypic position of Mammomonogamus laryngeus. Light and scanning electron microscopy (SEM) showed details of the papillae, amphids, festoons, ribs, and teeth. Fluorescence microscopy enabled a detailed characterization of different structures, such as the bursal rays and SEM enabled the visualization of the specialized features of the cuticle surface in the male and female. Histopathological analyses, cryofracture and environmental SEM experiments of the infected tissues were carried out in order to investigate the lesions resultant from the parasitism. In addition, the parasite couples were submitted to cryofracture and these results revealed details of the reproductive structures of both sexes, including the male spicule.
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Affiliation(s)
- Eduardo José Lopes-Torres
- Laboratório de Helmintologia Romero Lascasas Porto, Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia, Universidade do Estado do Rio de Janeiro, Av. Professor Manoel de Abreu, 444, Vila Isabel, Rio de Janeiro, Brazil.
| | - Raul Henrique da Silva Pinheiro
- Laboratório de Histologia e Embriologia Animal, Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia - UFRA, Belém, Pará, 66.077-830, Brazil; Programa de Pós-graduação em Sociedade, Natureza e Desenvolvimento, Instituto de Ciências e Tecnologia das Águas, Universidade Federal do Oeste do Pará - UFOPA, Santarém, Pará, 68.040-255, Brazil
| | - Rogério Antonio Ribeiro Rodrigues
- Laboratório de Histologia e Embriologia Animal, Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia - UFRA, Belém, Pará, 66.077-830, Brazil
| | - Loreno da Costa Francez
- Laboratório de Histologia e Embriologia Animal, Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia - UFRA, Belém, Pará, 66.077-830, Brazil
| | - Evonnildo Costa Gonçalves
- Laboratório de Tecnologia Biomolecular, Instituto de Ciências Biológicas, Universidade Federal do Pará - UFPA, Belém, Pará, 66.075-110, Brazil
| | - Elane Guerreiro Giese
- Laboratório de Histologia e Embriologia Animal, Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia - UFRA, Belém, Pará, 66.077-830, Brazil.
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Furlaneto IP, da Conceição ML, Conceição EC, Lopes ML, Rodrigues YC, Macelino BR, Gomes HM, Suffys PN, Guimarães RJDPSE, da Silva MG, Duarte RS, da Costa Francez L, Casseb ADR, Câmara VDM, Pereira WLA, da Costa ARF, Lima KVB. Molecular epidemiology of mycobacteria among herds in Marajó Island, Brazil, reveals strains genetically related and potential zoonotic risk of clinical relevance. Infect Genet Evol 2019; 77:104044. [PMID: 31634644 DOI: 10.1016/j.meegid.2019.104044] [Citation(s) in RCA: 4] [Impact Index Per Article: 0.8] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 04/08/2019] [Revised: 07/08/2019] [Accepted: 09/17/2019] [Indexed: 02/06/2023]
Abstract
Mycobacterium bovis is the main causative agent of bovine tuberculosis (bTB) being among the animal-adapted Mycobacterium tuberculosis complex. Herds can also be infected with non-tuberculous mycobacteria (NTM) causing a negative effect on the economy and on animal and human health through zoonotic infections. Molecular tools are required for mycobacteria identification; thus, it is laborious to determine the epidemiological information of mycobacteria among herds. We aimed to describe the mycobacterial pathogens associated with cases of suspected bTB lesions in cattle/buffaloes slaughtered for consumption and to investigate bTB transmission. We evaluated 74 lesion samples from 48 animals (27 bovine/21 buffaloes) from 16 mapped farms. Positives samples from nested-PCR were cultured in Lowenstein-Jensen (LJ), 2% pyruvate (LJ + P), and 2% glycerol (LJ + G) media, followed by Ziehl-Neelsen (ZN) staining technique and partial gene sequencing (hsp65, rpoB, and 16S-rRNA). Spoligotyping and 24-MIRU-VNTR were performed. The LJ + P increased the chance of obtaining bacilli. The respiratory tract and the oral cavity were the most important infection route. In addition, the calcified part of the lesions suggested chronic bTB. Spoligotypes of M. bovis (SIT986/SB0885) differed from others found in South America, and the MIRU-VNTR 24 loci suggested that bTB was associated to highly related strains. The NTM species found are of clinical importance in humans.
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Affiliation(s)
- Ismari Perini Furlaneto
- Programa de Pós-Graduação Biologia Parasitária na Amazônia, Centro de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade do Estado do Pará, Rua do Una 156, Telégrafo, Belém, Pará, 66 050-540, Brazil.
| | - Marília Lima da Conceição
- Programa de Pós-Graduação Biologia Parasitária na Amazônia, Centro de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade do Estado do Pará, Rua do Una 156, Telégrafo, Belém, Pará, 66 050-540, Brazil; Faculdade de Farmácia, Universidade de Lisboa, Avenida Professor Gama Pinto, Lisboa 1649-003, Portugal
| | - Emilyn Costa Conceição
- Instituto de Microbiologia Paulo de Góes, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Ilha Cidade Universitária - s/n bl I ss, Rio de Janeiro, RJ 21941-970, Brazil; Laboratório de Bacteriologia e Bioensaios, Instituto Nacional de Infectologia Evandro Chagas, Fiocruz, Av. Brasil 4365, Manguinhos, Rio de Janeiro, RJ 21040-900, Brazil
| | - Maria Luíza Lopes
- Seção de Bacteriologia e Micologia, Instituto Evandro Chagas, Rodovia BR-316 km 7 s/n, Levilândia, Ananindeua, Pará 67030-000, Brazil
| | - Yan Corrêa Rodrigues
- Programa de Pós-Graduação Biologia Parasitária na Amazônia, Centro de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade do Estado do Pará, Rua do Una 156, Telégrafo, Belém, Pará, 66 050-540, Brazil
| | - Beatriz Reis Macelino
- Centro de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade do Estado do Pará, Rua do Una 156, Telégrafo, Belém, Pará, 66 050-540, Brazil
| | - Harrison Magdinier Gomes
- Laboratório de Biologia Molecular Aplicada à Microbactéria, Instituto Oswaldo Cruz, Fiocruz, Av. Brasil 4365, Manguinhos, Rio de Janeiro, RJ 21040-900, Brazil
| | - Philip Noel Suffys
- Laboratório de Biologia Molecular Aplicada à Microbactéria, Instituto Oswaldo Cruz, Fiocruz, Av. Brasil 4365, Manguinhos, Rio de Janeiro, RJ 21040-900, Brazil
| | | | - Marlei Gomes da Silva
- Instituto de Microbiologia Paulo de Góes, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Ilha Cidade Universitária - s/n bl I ss, Rio de Janeiro, RJ 21941-970, Brazil
| | - Rafael Silva Duarte
- Instituto de Microbiologia Paulo de Góes, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Ilha Cidade Universitária - s/n bl I ss, Rio de Janeiro, RJ 21941-970, Brazil
| | - Loreno da Costa Francez
- Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia, Estr. Principal da Ufra, Curió Utinga, Belém, PA 2150-2476, Brazil
| | - Alexandre do Rosário Casseb
- Instituto da Saúde e Produção Animal, Universidade Federal Rural da Amazônia, Estr. Principal da Ufra, Curió Utinga, Belém, PA 2150-2476, Brazil
| | - Volney de Magalhães Câmara
- Programa de Pós-Graduação em Saúde Coletiva, Instituto de Estudos em Saúde Coletiva, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Avenida Horacio Macedo, S/N, Ilha do Fundão, Rio de Janeiro- RJ 21941-598, Brazil
| | - Washington Luiz Assunção Pereira
- Programa Pós-graduação em Saúde e Produção Animal na Amazônia, Universidade Federal Rural da Amazônia, Avenida Presidente Tancredo Neves, 2501, Belém, Pará 66077-830, Brazil
| | - Ana Roberta Fusco da Costa
- Seção de Bacteriologia e Micologia, Instituto Evandro Chagas, Rodovia BR-316 km 7 s/n, Levilândia, Ananindeua, Pará 67030-000, Brazil
| | - Karla Valéria Batista Lima
- Programa de Pós-Graduação Biologia Parasitária na Amazônia, Centro de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade do Estado do Pará, Rua do Una 156, Telégrafo, Belém, Pará, 66 050-540, Brazil; Seção de Bacteriologia e Micologia, Instituto Evandro Chagas, Rodovia BR-316 km 7 s/n, Levilândia, Ananindeua, Pará 67030-000, Brazil.
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